Способ воздействия низкоинтенсивным электромагнитным излучением, преобразованным биоструктурамиВ качестве источника электромагнитного излучения был использован гелий-неоновый лазер мощностью 2 мВт и длиной волны 632.8 нм, который имеет две одночастотные, совмещенные, ортогональные линейно поляризованные моды излучения [Г.Г. Тертышный, 1999]. Генерацию электромагнитного излучения проводили по схеме интерферометра Фабри-Перо, в которой рабочий лазерный луч многократно проходит через тонкие слои: покровное стекло, слой клеток свежепрепарированных тканей поджелудочной железы или селезенки здорового новорожденного крысенка линии Wistar (Р2-4), предметное стекло. Перед проведением эксперимента изъятые органы (поджелудочная железа, селезенка) в объеме 3 мм3 наносили на предметное стекло, накрывали покровным стеклом и помещали на оптической оси лазерного луча. Юстировку стекол с препаратами проводили таким образом, чтобы обеспечить частичное обратное отражение луча, модулированного препаратами, в резонатор лазера. Такой многопроходный режим позволяет препарату выступать в роли оптического коррелятора [Мазур, Грачев, 1985] и влиять на распределение вторичных мод излучения лазера. Оптические сигналы регистрировались и подавались на электронную схему, которая управляет режимом генерации лазера, при этом происходит частотная стабилизация когерентного излучения. В таком режиме работы импульсный блок питания лазера, играющий роль передатчика электромагнитного излучения, генерирует преобразованное зондируемыми препаратами электромагнитное излучение. Расстояние от зондируемого препарата до активного элемента лазера 11см. На рисунке 1 представлены зарегистрированные сигналы электромагнитного излучения He-Ne лазера в состоянии резонанса. а Рис.1. Сигнал с блока питания лазера в резонансном режиме без биообъекта (а) и спектр частотно-амплитудных и фазовых составляющих электромагнитного излучения сканируемой ткани поджелудочной железы (б). Для исключения побочного влияния внешних факторов воздействия для каждой опытной группы параллельно формировались контрольная и плацебо группы. В контрольных группах (табл.1) воздействие электромагнитным излучением не проводилось. Животных 1-ой опытной группы (табл.1) подвергали корригирующему воздействию электромагнитным излучением, преобразованным тканями поджелудочной железы и селезенки новорожденной крысы (Р2-4) (пЭМИ) с 3-х суток с момента введения аллоксана. На животных 2-ой опытной группы (табл.1) осуществляли превентивное воздействие пЭМИ, за сутки до моделирования аллоксанового сахарного диабета. Животных 1-ой плацебо группы (табл.1) подвергали воздействию электромагнитным излучением, не преобразованным биоструктурами, начиная с 3-х суток с момента введения аллоксана. Животных 2-ой плацебо группы (табл.1) подвергали воздействию электромагнитным излучением, также не преобразованным биоструктурами, а аллоксановый сахарный диабет моделировали спустя сутки после последнего воздействия. Животных опытных и плацебо групп располагали на расстоянии 70 см от источника электромагнитного излучения. Воздействие пЭМИ на 1 и 2-ю опытные группы проводили ежедневно по 30 минут в течение 4-х дней по схеме: 10 минутное воздействие пЭМИ, полученным в результате прохождения лазерного луча через препарат с тканью поджелудочной железы; 10 минутное воздействие пЭМИ, полученным в результате прохождения лазерного луча через препарат с тканью селезёнки; 10 минутное воздействие пЭМИ, полученным в результате прохождения лазерного луча через препарат с тканью поджелудочной железы. Воздействие не преобразованным биоструктурами электромагнитным излучением на животных 1-ой и 2-ой плацебо групп осуществляли в течение 4-х дней по 30 минут ежедневно. При этом лазерный луч проходил через предметное и покровное стекла, не содержащих биоструктуры. В группе интактных животных экспериментальный сахарный диабет не моделировали и воздействие электромагнитным излучением не проводили.
|
б 
